Подготовка тканей к гистологическому исследованию

Декальцинирующую жидкость меняют через

• 1-2 часа;
• 24-48 часа;
• каждую неделю;
• каждые 2 недели

Для качественного уплотнения материала его необходимо выдержать

• как минимум в 2-х сменах парафина при -50ºС;
• как минимум в 2-х сменах парафина при -56ºС;
• как минимум в 3-х сменах парафина при -50ºС;
• как минимум в 3-х сменах парафина при -56ºС

Завершение декальцинации определяют по

• изменению цвета образца;
• отсутствию хруста при протыкании образца иголкой;
• повышению pH раствора до 8.0;
• помутнению декальцинирующей жидкости;
• понижению pH раствора до 5

Из всех нижеперечисленных органов аутолиз быстрее всего начинает развиваться в

• миокарде;
• печени;
• поджелудочной железе;
• селезенке;
• скелетных мышцах

Из всех нижеперечисленных сложных фиксаторов формалин не содержит

• жидкость Буэна;
• жидкость Карнуа;
• жидкость Орта;
• жидкость Рего;
• жидкость Ценкера

Из паренхиматозного органа кусочек ткани для исследования иссекают

• безразлично к ориентации вырезаемого кусочка;
• безразлично к строению исследуемого органа;
• перпендикулярно его поверхности с учетом строения органа;
• тангенциально к поверхности органа и с учетом его строения

Иммерсионые методы фиксации

• инактивируют ферменты за счет вытеснения воды из межклеточной жидкости;
• инактивируют ферменты за счет денатурации белков и дегидратации;
• инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в кислую сторону;
• инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в щелочную сторону

К заливочным средам относятся

• ацетон, спирт, пикриновая кислота;
• воск, карбовакс, терменвокс;
• парафин, целлоидин, желатин;
• спирт-эфир

К простым иммерсионным фиксаторам относится

• жидкость Буэна;
• жидкость Карнуа;
• жидкость Рего;
• формалин;
• ценкер-формол

К физическим методам фиксации относят

• применение абсолютного спирта;
• применение ацетона;
• применение низкой температуры;
• применение раствора формалина

Каждый кусочек ткани маркируется

• перед заливкой в фиксирующий раствор;
• перед наклеиванием на предметное стекло;
• перед проводкой;
• после фиксации

Лучшим фиксатором для исследования липидов является

• пикриновая кислота;
• уксусная кислота;
• хромовая кислота;
• четырехокись осмия

Лучшим фиксатором для исследования митохондрий и комплекса Гольджий является

• пикриновая кислота;
• уксусная кислота;
• хромовая кислота;
• четырехокись осмия

Лучшим фиксатором для исследования срочных биопсий и гистохимических исследований является

• ацетон;
• бутиловый спирт;
• изоамиловый спирт;
• метиловый спирт;
• этиловый спирт

Лучшим фиксатором для мазков крови является

• ацетон;
• бутиловый спирт;
• изоамиловый спирт;
• метиловый спирт;
• этиловый спирт

Минимальное время промывки материала после формалиновой фиксации при условии небольшого размера кусочков составляет

• 1 час;
• 12 часов;
• 2 часа;
• 24 часа;
• 3 часа

На поперечном срезе исследуют

• серозные оболочки;
• стенки паренхиматозных органов;
• стенки полых органов;
• эндокринные железы

Нейтрализация формалина производится добавлением

• бихромата калия;
• молибдата аммония;
• углекислого кальция;
• цитрата натрия;
• этилового спирта

Объем фиксирующей жидкости должен превышать объем кусочков

• не мене чем в 2-3 раза;
• не менее чем в 10-15 раз;
• не менее чем в 20 раз;
• не менее чем в 5 раз;
• соответствовать объему кусочков

Обязательным условием для фиксации материала срочных биопсий является

• наличие спирта в фиксирующей жидкости;
• наличие сулемы в фиксирующей жидкости;
• наличие формалина в фиксирующей жидкости;
• повышенная как минимум до 56 градусов С температура;
• пониженная как минимум до 12 градусов С температура

Оптимальный объем костной ткани для успешного проведения декальцинации вне зависимости от способа (химический, электролитический) составляет

• ,5 куб. см;
• 1 куб. см;
• 2 куб. см;
• 4 куб. см

Освобождение ткани от формалина после фиксации проводится с помощью

• длительного пребывание в кислом растворе;
• промывки в 90º-96º спирте;
• промывки в проточной воде;
• промывки в смеси пикриновой кислоты и 70º-80º спирта

Показанием для замены фиксирующей жидкости на новую порцию является

• её помутнение или изменение цвета;
• изменение её вязкости;
• увеличение её объема;
• уменьшение её объема

При гистохимических методах исследования физические (низкотемпературные) методы фиксации предпочтительнее, потому что они

• менее ресурсозатратны;
• на порядки быстрее инактивируют ферменты;
• не деформируют ткани;
• не приводят к денатурации белка

При исследовании патологически измененных органов обязательным условием для вырезки является

• вырезка всего объема измененной ткани;
• вырезка максимально большого участка измененной ткани;
• вырезка минимально необходимого участка измененной ткани;
• вырезка с захватом здоровой ткани

Проводка материала по спиртам возрастающей концентрации имеет целью

• обезвоживание и обезжиривание материала;
• уплотнение и обезвоживание материала;
• уплотнение и обезжиривание материала;
• уплотнение, обезвоживание и обезжиривание материала

Промежуточным растворителем для парафина является

• ацетон;
• карбовакс;
• ксилол или толуол;
• пчелиный воск;
• спирт-эфир

Сильнее всего сморщивает ткани

• фиксация ацетоном;
• фиксация бутиловым спиртом;
• фиксация метиловым спиртом;
• фиксация формалином;
• фиксация этиловым спиртом

Спиртовая фиксация по сравнению с формалиновой

• менее требовательная к размерам кусочков;
• полностью блокирует ферменты при любой концентрации этанола и при любой температуре;
• протекает быстрее;
• сильнее сморщивает ткани

Толщина кусочка ткани перед заливкой в фиксирующие смеси не должны превышать

• ,5-1см;
• 1,5-2.0 см;
• 1-1,5 см;
• размеры не имеют значения

Фиксирующее действие этанола реализуется за счет

• дегидратации;
• денатурации белков;
• деполимеризации углеводов;
• обратимого обезжиривания клеток;
• функционального истощения ферментных систем

Формалин (формол) является

• 10% водным раствором формальдегида;
• 15% водным раствором формальдегида;
• 20% водным раствором формальдегида;
• 35-40% водным раствором формальдегида;
• 5% водным раствором формальдегида

Формалин имеет кислое значение pH так как он

• является альдегидом ацетилсалициловой кислоты;
• является альдегидом глутаровой кислоты;
• является альдегидом лимонной кислоты;
• является альдегидом муравьиной кислоты;
• является альдегидом уксусной кислоты

Формалиновый пигмент можно удалить из ткани с помощью

• промывки в большом количестве воды;
• промывки в ксилоле;
• промывки в спиртах возрастающей концентрации;
• промывки в спиртах понижающейся концентрации

Цель фиксации

• обезвоживание ткани;
• обезжиривание тканей;
• сохранение прижизненных структур ткани;
• уплотнение тканей

Что из нижеперечисленного нельзя делать с материалом перед его погружением в фиксирующий раствор?

• ополаскивать водой;
• ополаскивать раствором фиксатора;
• опускать в раствор фиксатора сразу же после иссечения;
• проводить его маркировку